2.43
1.65
1.98
0.73
1.88
1.81
2.43
2.2 חומרים סטנדרטיים המשמשים בעקומת הכיול של התפלגות המסה המולקולרית היחסית: אינסולין, מיקופפטידים, גליצין-גליצין-טירוזין-ארגינין, גליצין-גליצין-גליצין
3 מכשירים וציוד
23.2
21.4
22.2
16.1
22.3
20.8
23.9
27.5
בסך הכל, שיעור חומצות האמינו במוצרי סוסטאר גבוה יותר מזה שבמוצרי זינפרו.
חלק 8 השפעות השימוש
השפעות של מקורות שונים של מינרלים קורט על ביצועי הייצור ואיכות הביצים של תרנגולות מטילות בתקופת ההטלה המאוחרת
תהליך הייצור
טכנולוגיית קלאציה ממוקדת
טכנולוגיית אמולסיה גזירה
טכנולוגיית ריסוס וייבוש בלחץ
טכנולוגיית קירור וייבוש לחות
טכנולוגיית בקרת סביבה מתקדמת
נספח א': שיטות לקביעת התפלגות המסה המולקולרית היחסית של פפטידים
אימוץ תקן: GB/T 22492-2008
1 עקרון הבדיקה:
זה נקבע על ידי כרומטוגרפיית סינון ג'ל בעלת ביצועים גבוהים. כלומר, באמצעות חומר מילוי נקבובי כפאזה נייחת, בהתבסס על ההבדל בגודל המסה המולקולרית היחסית של רכיבי הדגימה להפרדה, שזוהה בקשר הפפטידי באורך גל בליעה אולטרה סגול של 220 ננומטר, תוך שימוש בתוכנת עיבוד נתונים ייעודית לקביעת התפלגות המסה המולקולרית היחסית על ידי כרומטוגרפיית סינון ג'ל (כלומר, תוכנת GPC), הכרומטוגרמות והנתונים שלהן עובדו, וחושבו כדי לקבל את גודל המסה המולקולרית היחסית של פפטיד הסויה ואת טווח ההתפלגות.
2. ריאגנטים
על המים הניסיוניים לעמוד במפרט של מים משניים ב-GB/T6682, השימוש בריאגנטים, למעט הוראות מיוחדות, הוא טהור מבחינה אנליטית.
2.1 ריאגנטים כוללים אצטוניטריל (טהור מבחינה כרומטוגרפית), חומצה טריפלואורואצטית (טהורה מבחינה כרומטוגרפית),
2.2 חומרים סטנדרטיים המשמשים בעקומת הכיול של התפלגות המסה המולקולרית היחסית: אינסולין, מיקופפטידים, גליצין-גליצין-טירוזין-ארגינין, גליצין-גליצין-גליצין
3 מכשירים וציוד
3.1 כרומטוגרפיה נוזלית בעלת ביצועים גבוהים (HPLC): תחנת עבודה או אינטגרטור כרומטוגרפי עם גלאי UV ותוכנת עיבוד נתונים GPC.
3.2 יחידת סינון ופירוק גזים בוואקום פאזה ניידת.
3.3 משקל אלקטרוני: ערך מדורג 0.000 1 גרם.
4 שלבי הפעלה
4.1 תנאים כרומטוגרפיים וניסויי הסתגלות מערכתית (תנאי ייחוס)
- 4.1.1 עמודה כרומטוגרפית: TSKgelG2000swxl300 מ"מ × 7.8 מ"מ (קוטר פנימי) או עמודות ג'ל אחרות מאותו סוג בעלות ביצועים דומים המתאימות לקביעת חלבונים ופפטידים.
- 4.1.2 פאזה ניידת: אצטוניטריל + מים + חומצה טריפלואורואצטית = 20 + 80 + 0.1.
- 4.1.3 אורך גל לגילוי: 220 ננומטר.
- 4.1.4 קצב זרימה: 0.5 מ"ל/דקה.
- 4.1.5 זמן גילוי: 30 דקות.
- 4.1.6 נפח הזרקת דגימה: 20 מיקרוליטר.
- 4.1.7 טמפרטורת העמודה: טמפרטורת החדר.
- 4.1.8 על מנת שהמערכת הכרומטוגרפית תעמוד בדרישות הגילוי, נקבע כי בתנאי הכרומטוגרפיה הנ"ל, יעילות עמודת הכרומטוגרפיה בג'ל, כלומר, המספר התאורטי של לוחות (N), לא תפחת מ-10000 המחושב על סמך שיאי התקן הטריפפטידי (גליצין-גליצין-גליצין).
- 4.2 הפקת עקומות סטנדרטיות של מסה מולקולרית יחסית
- תמיסות הסטנדרט של פפטידים בעלי מסה מולקולרית יחסית השונות הנ"ל, בריכוז מסה של 1 מ"ג/מ"ל, הוכנו על ידי התאמת פאזה ניידת, עורבבו בפרופורציה מסוימת, ולאחר מכן סוננו דרך קרום פאזה אורגנית בגודל נקבוביות של 0.2 מיקרומטר ~ 0.5 מיקרומטר והוזרקו לדגימה, ולאחר מכן התקבלו הכרומטוגרמות של הסטנדרטים. עקומות כיול מסה מולקולרית יחסית ומשוואותיהן התקבלו על ידי שרטוט הלוגריתם של המסה המולקולרית היחסית כנגד זמן החזקה או על ידי רגרסיה לינארית.
4.3 טיפול בדגימה
שקלו במדויק 10 מ"ג של דגימה בבקבוק מדידה של 10 מ"ל, הוסיפו מעט פאזה ניידת, נערו באולטרסאונד במשך 10 דקות, כך שהדגימה תתמוסס לחלוטין ותערבב, דיללו עם פאזה ניידת עד למשקל, ולאחר מכן סננו דרך ממברנת פאזה אורגנית עם גודל נקבוביות של 0.2 מיקרומטר ~ 0.5 מיקרומטר, והתסנין נותח בהתאם לתנאי הכרומטוגרפיה בסעיף A.4.1.
- 5. חישוב התפלגות המסה המולקולרית היחסית
- לאחר ניתוח תמיסת הדגימה שהוכנה בסעיף 4.3 תחת התנאים הכרומטוגרפיים של 4.1, ניתן לקבל את המסה המולקולרית היחסית של הדגימה ואת טווח ההתפלגות שלה על ידי הצבת נתוני הכרומטוגרפיה של הדגימה בעקומת הכיול 4.2 באמצעות תוכנת עיבוד נתונים של GPC. ניתן לחשב את התפלגות המסות המולקולריות היחסיות של הפפטידים השונים באמצעות שיטת נרמול שטח השיא, לפי הנוסחה: X=A/A total×100
- בנוסחה: X - שבר המסה של פפטיד בעל מסה מולקולרית יחסית בפפטיד הכולל בדגימה, %;
- א - שטח שיא של פפטיד בעל מסה מולקולרית יחסית;
- סך A - סכום שטחי השיא של כל פפטיד בעל מסה מולקולרית יחסית, מחושב עם ציון של ספרה אחת אחרי הנקודה.
- 6 חזרתיות
- ההפרש המוחלט בין שתי קביעות בלתי תלויות שהתקבלו בתנאי חזרתיות לא יעלה על 15% מהממוצע האריתמטי של שתי הקביעות.
- נספח ב': שיטות לקביעת חומצות אמינו חופשיות
- אימוץ תקן: Q/320205 KAVN05-2016
- 1.2 ריאגנטים וחומרים
- חומצה אצטית קרחונית: טהורה אנליטית
- חומצה פרכלורית: 0.0500 מול/ליטר
- אינדיקטור: אינדיקטור קריסטל ויולט 0.1% (חומצה אצטית קרחונית)
- 2. קביעת חומצות אמינו חופשיות
הדגימות יובשו בטמפרטורה של 80 מעלות צלזיוס למשך שעה אחת.
יש להניח את הדגימה במיכל יבש להתקרר באופן טבעי לטמפרטורת החדר או להתקרר לטמפרטורה שמישה.שקלו כ-0.1 גרם של דגימה (בדיוק של 0.001 גרם) לתוך בקבוק חרוטי יבש של 250 מ"ל.המשך במהירות לשלב הבא כדי למנוע מהדגימה לספוג לחות סביבתית.הוסיפו 25 מ"ל של חומצה אצטית קרחונית וערבבו היטב למשך לא יותר מ-5 דקות.הוסיפו 2 טיפות של אינדיקטור ויולט קריסטלטיטררו עם תמיסת טיטרציה סטנדרטית של 0.0500 מול/ליטר (±0.001) של חומצה פרכלורית עד שהתמיסה משתנה מסגול לנקודת הקצה.
רשום את נפח התמיסה הסטנדרטית שנצרכה.
- בצע את מבחן הריק באותו הזמן.
- 3. חישוב ותוצאות
- תכולת חומצות האמינו החופשיות X בריאגנט מבוטאת כשבריר מסה (%) ומחושבת לפי הנוסחה: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, בנוסחה:
- C - ריכוז תמיסת חומצה פרכלורית סטנדרטית במול לליטר (מול/ליטר)
- V1 - נפח המשמש לטיטרציה של דגימות עם תמיסת חומצה פרכלורית סטנדרטית, במיליליטר (מ"ל).
- Vo - נפח המשמש לטיטרציה ריקה עם תמיסת חומצה פרכלורית סטנדרטית, במיליליטר (מ"ל);
M - מסת הדגימה, בגרמים (g).
| 0.1445: מסה ממוצעת של חומצות אמינו שווה ערך ל-1.00 מ"ל של תמיסת חומצה פרכלורית סטנדרטית [c (HClO4) = 1.000 מול / ליטר]. | 4.2.3 תמיסת טיטרציה סטנדרטית של צריום סולפט: ריכוז c [Ce (SO4) 2] = 0.1 מול/ליטר, הוכנה לפי GB/T601. | |
| אימוץ תקנים: Q/70920556 71-2024 | 1. עקרון הקביעה (Fe כדוגמה) | לקומפלקסי ברזל של חומצות אמינו יש מסיסות נמוכה מאוד באתנול נטול מים, ויוני מתכת חופשיים מסיסים באתנול נטול מים. ההבדל במסיסות בין השניים באתנול נטול מים נוצל כדי לקבוע את קצב הקלאציה של קומפלקסי ברזל של חומצות אמינו. |
| בנוסחה: V1 - נפח תמיסת צריום סולפט סטנדרטית שנצרכה לצורך טיטרציה של תמיסת הבדיקה, מ"ל; | אתנול נטול מים; השאר זהה לסעיף 4.5.2 ב-GB/T 27983-2011. | 3. שלבי הניתוח |
| בצעו שני ניסויים במקביל. שקלו 0.1 גרם מהדגימה המיובשת ב-103±2°C למשך שעה, בדיוק של 0.0001 גרם, הוסיפו 100 מ"ל של אתנול נטול מים להמסה, סננו, סננו את השאריות ונשטפו עם 100 מ"ל של אתנול נטול מים לפחות שלוש פעמים, לאחר מכן העבירו את השאריות לבקבוק חרוטי של 250 מ"ל, הוסיפו 10 מ"ל של תמיסת חומצה גופרתית בהתאם לסעיף 4.5.3 ב-GB/T27983-2011, ולאחר מכן בצעו את השלבים הבאים בהתאם לסעיף 4.5.3 "חממו להמסה ולאחר מכן הניחו להתקרר" ב-GB/T27983-2011. בצעו את בדיקת הריק בו זמנית. | 4. קביעת תכולת הברזל הכוללת | 4.1 עקרון הקביעה זהה לסעיף 4.4.1 ב-GB/T 21996-2008. |
4.2. ריאגנטים ותמיסות
| 4.2.1 חומצה מעורבת: הוסיפו 150 מ"ל של חומצה גופרתית ו-150 מ"ל של חומצה זרחתית ל-700 מ"ל מים וערבבו היטב. | 4.2.2 תמיסת אינדיקטור נתרן דיפנילאמין סולפונט: 5 גרם/ליטר, הוכנה לפי GB/T603. | 4.2.3 תמיסת טיטרציה סטנדרטית של צריום סולפט: ריכוז c [Ce (SO4) 2] = 0.1 מול/ליטר, הוכנה לפי GB/T601. | |
| 4.3 שלבי הניתוח | בצעו שני ניסויים במקביל. שקלו 0.1 גרם של דגימה, בדיוק של 020001 גרם, הכניסו לבקבוק חרוטי של 250 מ"ל, הוסיפו 10 מ"ל של חומצה מעורבת, לאחר המסה, הוסיפו 30 מ"ל מים ו-4 טיפות של תמיסת אינדיקטור נתרן דיאנילין סולפונט, ולאחר מכן בצעו את השלבים הבאים בהתאם לסעיף 4.4.2 בתקן GB/T21996-2008. בצעו את בדיקת הריק בו זמנית. | 4.4 ייצוג התוצאות | תכולת הברזל הכוללת X1 של קומפלקסים של חומצות אמינו ברזל במונחים של חלק מסה של ברזל, הערך מבוטא באחוזים, חושבה לפי נוסחה (1): |
| X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 | V0 - תמיסת צריום סולפט סטנדרטית שנצרכה לצורך טיטרציה של תמיסה ריקה, מ"ל; | V0 - תמיסת צריום סולפט סטנדרטית שנצרכה לצורך טיטרציה של תמיסה ריקה, מ"ל; | C - ריכוז בפועל של תמיסת צריום סולפט סטנדרטית, מול/ליטר5. חישוב תכולת הברזל בכלאטיםתכולת הברזל X2 בכלאט במונחים של חלק המסה של ברזל, הערך המבוטא באחוזים, חושבה לפי הנוסחה: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100 |
| בנוסחה: V1 - נפח תמיסת צריום סולפט סטנדרטית שנצרכה לצורך טיטרציה של תמיסת הבדיקה, מ"ל; | V2 - תמיסת צריום סולפט סטנדרטית שנצרכה לצורך טיטרציה של תמיסה ריקה, מ"ל;nom1 - מסת הדגימה, g. ניקח את הממוצע האריתמטי של תוצאות הקביעה המקבילה כתוצאות הקביעה, וההפרש המוחלט של תוצאות הקביעה המקבילה אינו עולה על 0.3%. | 0.05585 - מסת ברזל ברזלי מבוטאת בגרמים, שווה ערך ל-1.00 מ"ל של תמיסת צריום סולפט סטנדרטית C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 מול/ליטר.nom1 - מסת הדגימה, g. ניקח את הממוצע האריתמטי של תוצאות הקביעה המקבילה כתוצאות הקביעה, וההפרש המוחלט של תוצאות הקביעה המקבילה אינו עולה על 0.3%. | 6. חישוב קצב קלאציהקצב קלאציה X3, הערך מבוטא באחוזים, X3 = X2/X1 × 100נספח ג': שיטות לקביעת קצב הקלאציה של זינפרו |
אימוץ תקן: Q/320205 KAVNO7-2016
1. ריאגנטים וחומרים
א) חומצה אצטית קרחונית: טהורה אנליטית; ב) חומצה פרכלורית: 0.0500 מול/ליטר; ג) אינדיקטור: אינדיקטור קריסטל ויולט 0.1% (חומצה אצטית קרחונית)
2. קביעת חומצות אמינו חופשיות
2.1 הדגימות יובשו ב-80 מעלות צלזיוס למשך שעה אחת.
2.2 יש להניח את הדגימה במיכל יבש להתקרר באופן טבעי לטמפרטורת החדר או להתקרר לטמפרטורה שמישה.
2.3 שקלו כ-0.1 גרם של דגימה (בדיוק של 0.001 גרם) לתוך בקבוק חרוטי יבש של 250 מ"ל
2.4 המשך במהירות לשלב הבא כדי למנוע מהדגימה לספוג לחות סביבתית.
2.5 הוסיפו 25 מ"ל של חומצה אצטית קרחונית וערבבו היטב במשך לא יותר מ-5 דקות.
2.6 הוסיפו 2 טיפות של אינדיקטור קריסטל ויולט.
2.7 טיטררו עם תמיסת טיטרציה סטנדרטית של 0.0500 מול/ליטר (±0.001) של חומצה פרכלורית עד שהתמיסה משתנה מסגול לירוק למשך 15 שניות מבלי לשנות את צבעה כנקודת הסיום.
2.8 רשום את נפח תמיסת הסטנדרט שנצרכה.
2.9 בצע את בדיקת הריק בו זמנית.
- 3. חישוב ותוצאות
- קטלאנית
- Physicochemical parameters
V1 - נפח המשמש לטיטרציה של דגימות עם תמיסת חומצה פרכלורית סטנדרטית, במיליליטר (מ"ל).
Vo - נפח המשמש לטיטרציה ריקה עם תמיסת חומצה פרכלורית סטנדרטית, במיליליטר (מ"ל);
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
כתובת: מספר 147 דרך צ'ינגפו, טאון שואן, מחוז פוג'יאנג, העיר צ'נגדו, מחוז סצ'ואן, סין
טלפון: 86-18880477902
מוצרים
מינרלים אנאורגניים
- מינרלים אורגניים
- סוואהילית
- שירות מותאם אישית
- קישורים מהירים
פרופיל חברה
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| גוג'ראטי | לחץ לשאלה | © זכויות יוצרים - 2010-2025: כל הזכויות שמורות. | מפת אתר חיפוש מוביל טֵלֵפוֹן |
| טל | 86-18880477902 | ג'אוואנית | אֶלֶקטרוֹנִי וואטסאפ |
| 8618880477902 | סִינִית | צָרְפָתִית | |
| Bird | סִינִית | צָרְפָתִית | גֶרמָנִיָת סְפָרַדִית |
| Aquatic animals | יַפָּנִית | קוריאנית | עֲרָבִית יוונית |
| טוּרקִית | אִיטַלְקִית | ||
| Ruminant animal g/head day | January 0.75 | אינדונזית אפריקאנס שוודית |
פּוֹלָנִית
- באסקית
- קטלאנית
- Physicochemical parameters
הינדי
לאו
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
שונה
בולגרית
- סבואנו
- This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
- The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
- קרואטית
הוֹלַנדִי
| Application object | אורדו וייטנאמית | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| גוג'ראטי | האיטי | האוסה | קינירואנדה המונג הוּנגָרִי |
| Piglets and fattening pigs | איגבו | ג'אוואנית | קאנדה חמר כּוּרדִי |
| קירגיזית | לָטִינִית | ||
| Bird | 300～400 | 45～60 | מקדונית מלאית מלאיאלאם |
| Aquatic animals | 200～300 | 30～45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
נורווגית
- פאשטו
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
סרבית
ססוטו
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
שונה
סינדי
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
סוואהילית
טג'יקית
טמילית
טלוגו
תאילנדי
| Application object | אורדו וייטנאמית | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| אִידִישׁ | יורובה | זולו | קינירואנדה אוריה טורקמני |
| אויגורי | 250～400 | 37.5～60 | 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality; 2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion; 3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality. |
| Bird | 300～400 | 45～60 | 1. Improve feather glossiness; 2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk; 3. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 4. Improve feed conversion and increase growth rate. |
| Aquatic animals | January 300 | 45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
| Ruminant animal g/head day | 2.4 | 1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk; 2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality. |
4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
a) Mn: ≥ 10.0%
b) Total amino acids: ≥ 19.5%
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides
Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;
Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.
Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Breeding pig | 200～300 | 30～45 | 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility; 2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles. |
| Piglets and fattening pigs | 100～250 | 15～37.5 | 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance; 2. Promote growth and improve feed conversion significantly; 3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage. |
| Bird | 250～350 | 37.5～52.5 | 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate; 3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases. |
| Aquatic animals | 100～200 | 15～30 | 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance; 2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs. |
| Ruminant animal g/head day | Cattle 1.25 | 1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage; 2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs, and increase the newborn weight of young animals. | |
| Goat 0.25 |
Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates
| S/N | F: Functional attributes | A: Competitive differences | B: Benefits brought by competitive differences to users |
| 1.52 | Selectivity control of raw materials | Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides | High biological safety, avoiding cannibalism |
| 2 | Directional digestion technology for double protein biological enzyme | High proportion of small molecular peptides | More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability |
| 3 | Advanced pressure spray & drying technology | Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture | Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed |
| Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations | Improve the stability of feed products | ||
| 4 | Advanced production control technology | Totally enclosed process, high degree of automatic control | Safe and stable quality |
| 5 | Advanced quality control technology | Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate | Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency |
Part 7 Competitor Comparison
Standard VS Standard
Comparison of peptide distribution and chelation rate of products
| Sustar's products | Proportion of small peptides（180-500） | Zinpro's products | Proportion of small peptides（180-500） |
| AA-Cu | ≥74% | AVAILA-Cu | 78% |
| AA-Fe | ≥48% | AVAILA-Fe | 59% |
| AA-Mn | ≥33% | AVAILA-Mn | 53% |
| AA-Zn | ≥37% | AVAILA-Zn | 56% |
| Sustar's products | Chelation rate | Zinpro's products | Chelation rate |
| AA-Cu | 94.8% | AVAILA-Cu | 94.8% |
| AA-Fe | 95.3% | AVAILA-Fe | 93.5% |
| AA-Mn | 94.6% | AVAILA-Mn | 94.6% |
| AA-Zn | 97.7% | AVAILA-Zn | 90.6% |
The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.
Comparison of the content of 17 amino acids in different products
| Name of amino acids | Sustar's Copper Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA copper | Sustar's Ferrous Amino Acid C helate Feed Grade | Zinpro's AVAILA iron | Sustar's Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA manganese | Sustar's Zinc Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA zinc |
| aspartic acid (%) | 1.88 | 0.72 | 1.50 | 0.56 | 1.78 | 1.47 | 1.80 | 2.09 |
| glutamic acid (%) | 4.08 | 6.03 | 4.23 | 5.52 | 4.22 | 5.01 | 4.35 | 3.19 |
| Serine (%) | 0.86 | 0.41 | 1.08 | 0.19 | 1.05 | 0.91 | 1.03 | 2.81 |
| Histidine (%) | 0.56 | 0.00 | 0.68 | 0.13 | 0.64 | 0.42 | 0.61 | 0.00 |
| Glycine (%) | 1.96 | 4.07 | 1.34 | 2.49 | 1.21 | 0.55 | 1.32 | 2.69 |
| Threonine (%) | 0.81 | 0.00 | 1.16 | 0.00 | 0.88 | 0.59 | 1.24 | 1.11 |
| Arginine (%) | 1.05 | 0.78 | 1.05 | 0.29 | 1.43 | 0.54 | 1.20 | 1.89 |
| Alanine (%) | 2.85 | 1.52 | 2.33 | 0.93 | 2.40 | 1.74 | 2.42 | 1.68 |
| Tyrosinase (%) | 0.45 | 0.29 | 0.47 | 0.28 | 0.58 | 0.65 | 0.60 | 0.66 |
| Cystinol (%) | 0.00 | 0.00 | 0.09 | 0.00 | 0.11 | 0.00 | 0.09 | 0.00 |
| Valine (%) | 1.45 | 1.14 | 1.31 | 0.42 | 1.20 | 1.03 | 1.32 | 2.62 |
| Methionine (%) | 0.35 | 0.27 | 0.72 | 0.65 | 0.67 | 0.43 | January 0.75 | 0.44 |
| Phenylalanine (%) | 0.79 | 0.41 | 0.82 | 0.56 | 0.70 | 1.22 | 0.86 | 1.37 |
| Isoleucine (%) | 0.87 | 0.55 | 0.83 | 0.33 | 0.86 | 0.83 | 0.87 | 1.32 |
| Leucine (%) | 2.16 | 0.90 | 2.00 | 1.43 | 1.84 | 3.29 | 2.19 | 2.20 |
| Lysine (%) | 0.67 | 2.67 | 0.62 | 1.65 | 0.81 | 0.29 | 0.79 | 0.62 |
| Proline (%) | 2.43 | 1.65 | 1.98 | 0.73 | 1.88 | 1.81 | 2.43 | 2.78 |
| Total amino acids (%) | 23.2 | 21.4 | 22.2 | 16.1 | 22.3 | 20.8 | 23.9 | 27.5 |
Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.
Part 8 Effects of use
Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period
Production Process
- Targeted chelation technology
- Shear emulsification technology
- Pressure spray & drying technology
- Refrigeration & dehumidification technology
- Advanced environmental control technology
Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides
Adoption of standard: GB/T 22492-2008
1 Test Principle:
It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.
2. Reagents
The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.
2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),
2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrument and equipment
3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.
3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.
3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.
4 Operating steps
4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)
4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.
4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.
4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.
4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.
4.1.5 Detection time: 30 min.
4.1.6 Sample injection volume: 20μL.
4.1.7 Column temperature: room temperature.
4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).
4.2 Production of relative molecular mass standard curves
The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.
4.3 Sample treatment
Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.
5. Calculation of relative molecular mass distribution
After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100
In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;
A - Peak area of a relative molecular mass peptide;
Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.
6 Repeatability
The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.
Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids
Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016
1.2 Reagents and materials
Glacial acetic acid: analytically pure
Perchloric acid: 0.0500 mol/L
Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
The samples were dried at 80°C for 1 hour.
Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.
Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture
Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.
Add 2 drops of crystal violet indicator
Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.
Record the volume of standard solution consumed.
Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:
C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate
Adoption of standards: Q/70920556 71-2024
1. Determination principle (Fe as an example)
Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.
2. Reagents & Solutions
Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.
3. Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.
4. Determination of total iron content
4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.
4.2. Reagents & Solutions
4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.
4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.
4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.
4.3 Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.
4.4 Representation of results
The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100
In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L
5. Calculation of iron content in chelates
The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;
0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.
m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.
6. Calculation of chelation rate
Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100
Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate
Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagents and materials
a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.
2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask
2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.
2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.
2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.
2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.
2.8 Record the volume of standard solution consumed.
2.9 Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)
In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
4. Calculation of chelation rate
The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.
Post time: Sep-17-2025
